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l_asym_0_25 [2020/07/24 09:15] Nicolas Schabanel [2020.06.15-16 Réception des plaques] |
l_asym_0_25 [2021/03/05 15:29] (current) |
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| * Tube n°33 = 240uL de n°11 (Long BA 2) | * Tube n°33 = 240uL de n°11 (Long BA 2) | ||
| * Tube n°34 = 240uL de n°12 (Long BA 3) | * Tube n°34 = 240uL de n°12 (Long BA 3) | ||
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| + | ===== 2020.06.19-07.23 ===== | ||
| + | * **Tube T2' dilué à 1:2000:** 5uL de T2 (little L) dilué à 1:200 + 5uL TAEMg 10x + 40uL H20 -> concentration des strands estimée à 0.15nM mis à cuire le 2020.06.19 à 19:00 pour 2 semaines (cf courbe ci-dessous) | ||
| + | * **Tube L-all à ~200nM:** 5uL de T5, T6, T7, T9 et 2.3uL de T8 + 5uL TAEMg 10x + 23.7uL H20 mis à cuire avec le tube ci-dessus | ||
| + | * **courbe de température suivie:** 90°C (15min) -> 50°C ->[-0.5°C/15min x40]-> [ 30°C (4h) > 32°C (30s) ] x99 (=400h ~17j) -> 28°C (hold pendant 3 semaines de plus) | ||
| + | * //Les deux tubes ont été mis au frais le 2020.07.23 à 17:00 dans des tubes sans étiquette// | ||
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| + | ===== 2020.06.26 ===== | ||
| + | Prélèvement d'un échantillon de T2' (20uL prélevé) et de L-all (10uL prélevé) au bout d'une semaine de cuisson. | ||
| + | Imagerie AFM peu lisible pour L-all, concentration toujours trop élevée, même dilué 1:500, il faut sans doute diluer encore un peu plus. | ||
| + | Pas d'imagerie de T2' | ||